免疫共沉淀事项 投稿:姚磦磧

最近我们实验室想做这个试验,以前也没有做过,如果有战友做过这个试验,希望介绍点经验和教训,谢谢乐。 应战友要求,在网上找乐一下基础资料,方便大家查看,虽然下面也列出了试验方法,但在实际实验室可能并不一样,希望战友们较少些自己的亲身体会,让大家和我本人…

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最近我们实验室想做这个试验,以前也没有做过,如果有战友做过这个试验,希望介绍点经验和教训,谢谢乐。

应战友要求,在网上找乐一下基础资料,方便大家查看,虽然下面也列出了试验方法,但在实际实验室可能并不一样,希望战友们较少些自己的亲身体会,让大家和我本人在即将进行的试验中少走弯路。先谢谢各位了

免疫共沉淀 免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)是以抗体和抗原之间的专一性作用为基础的用于研究蛋白质相互作用的经典方法。是确定两种蛋白质在完整细胞内生理性相互作用的有效方法。 其原理是:当细胞在非变性条件下被裂解时,完整细胞内存在的许多蛋白质-蛋白质间的相互作用被保留了下来。如果用蛋白质X的抗体免疫沉淀X,那么与X在体内结合的蛋白质Y也能沉淀下来。这种方法常用于测定两种目标蛋白质是否在体内结合;也可用于确定一种特定蛋白质的新的作用搭档。

其优点为:(1)相互作用的蛋白质都是经翻译后修饰的,处于天然状态;(2)蛋白的相互作用是在自然状态下进行的,可以避免人为的影响;(3)可以分离得到天然状态的相互作用蛋白复合物。缺点为:(1)可能检测不到低亲和力和瞬间的蛋白质-蛋白质相互作用;(2)两种蛋白质的结合可能不是直接结合,而可能有第三者在中间起桥梁作用; (3)必须在实验前预测目的蛋白是什么,以选择最后检测的抗体,所以,若预测不正确,实验就得不到结果,方法本身具有冒险性。

实验流程为:

(1)转染后24-48 h 可收获细胞,加入适量细胞裂解缓冲液(含蛋白酶抑制剂),冰上裂解30min, 细胞裂解液于4°C, 最大转速离心30 min后取上清;

(2)取少量裂解液以备Western blot分析,剩余裂解液加1μg相应的抗体加入到细胞裂解液,4°C缓慢摇晃孵育过夜;

(3)取10μl protein A 琼脂糖珠,用适量裂解缓冲液洗3 次,每次3,000 rpm离心3 min;

(4)将预处理过的10μl protein A 琼脂糖珠加入到和抗体孵育过夜的细胞裂解液中4°C缓慢摇晃孵育2-4h,使抗体与protein A琼脂糖珠偶连;

(5)免疫沉淀反应后,在4°C 以3,000 rpm 速度离心3 min,将琼脂糖珠离心至管底;将上清小心吸去,琼脂糖珠用1ml裂解缓冲液洗3-4次;最后加入15μl的2×SDS 上样缓冲液,沸水煮5分钟;

(6)SDS-PAGE, Western blotting或质谱仪分析。

注意的问题:

(1)细胞裂解采用温和的裂解条件,不能破坏细胞内存在的所有蛋白质-蛋白质相互作用,多采用非离子变性剂(NP40或Triton X-100)。每种细胞的裂解条件是不一样的,通过经验确定。不能用高浓度的变性剂(0.2%SDS),细胞裂解液中要加各种酶抑制剂,如商品化的cocktailer。

(2)使用明确的抗体,可以将几种抗体共同使用

(3)使用对照抗体:

单克隆抗体:正常小鼠的IgG或另一类单抗

兔多克隆抗体:正常兔IgG

在免疫共沉淀实验中要保证实验结果的真实性,应注意以下几点:

(1) 确保共沉淀的蛋白是由所加入的抗体沉淀得到的,而并非外源非特异蛋白,单克隆抗体的使用有助于避免污染的发生;

(2) 要确保抗体的特异性,即在不表达抗原的细胞溶解物中添加抗体后不会引起共沉淀;

(3) 确定蛋白间的相互作用是发生在细胞中,而不是由于细胞的溶解才发生的,这需要

进行蛋白质的定位来确定。ChIP是个很郁闷的实验,时间花费N长,如果做的不好非常打击人,我也谈不上什么成功经验呢

1)显然抗体来源要可靠,很多在WB上很好的商业化抗体并不能成功使用到ChIP上。

2)超声处理要充分,处理完呢以后DNA一定要跑胶检测看看,如果片段都很大,结果受到的影响很大,特别是如果ChIP组蛋白谢谢 alixtardxy 现在好多大牛文章上面都用IP ,做的也很漂亮,摸索好了条件,应该是不难做的,有个疑问 ,为什么在WB上能用的 在IP上就不能用乐啊?对不起,我直接想到ChIP上去了,所以才出现了上面的那些说法。你的意思应该是 chip 用的抗体是特殊的吧?即便和WB试验一样,抗同样的抗原。楼主是否把免疫共沉淀的定义和实验目的说下,这样方便讨论,呵呵这个试验太陌生了,还望各位多多指教啊ChIP是ChIp(染色质免疫沉淀),不是楼主说的Co-IP(免疫共沉淀),二者是风马牛不相及的两个试验和概念,原理和目的都不一样,楼上很多人将二者搞混了.

染色质免疫沉淀的作用是鉴定蛋白与DNA的结合,相当于EMSA(凝胶滞留试验)的体内试验。

基本原理是用抗体将目标蛋白及其它可能结合的DNA沉淀下来,然后用引物扩增DNA的序列。因此这个目标蛋白通常具备转录调节功能,能够结合DNA,目前也有做结合RNA的Chip。

免疫共沉淀的作用是鉴定蛋白与蛋白的相互作用。用抗体将蛋白(A)及其可能结合的目标蛋白(B)沉淀下来。因此这个A蛋白可以是任何蛋白。“共”指反过来用B的抗体也能将A/B复合物沉下来。如果是单向的,通常叫免疫沉淀。楼主的帖子“免疫共沉淀的具体注意事项”不适合放在核酸版块,更适合放在蛋白质版块。

相反,“染色质免疫沉淀CHIP”适合在该版块。我做的不是很多,但是有几点提出来和大家讨论下。

我想这个试验最关键的就是细胞的处理和抗体来源。

如二楼所说,的确很多WB的抗体是不一定可以用到ChIP上的,这个应该是和抗体的制作过程有关系的。至于多抗还是单抗,我认为各有优缺点。比如说单抗是特异性的针对某种表位的,这样可以选择几种单抗混合使用效果会好些,而且背景也低很多。多抗虽然比较复杂,最主要的是非特异性反应比较多,导致试验结果不好判断,但是经过合理的纯化,应该会将这个缺点变小。做ChIP的抗体应该是能够针对空间表位的,虽然某些针对线性表位的抗体也能够运用其中,但是那只是小部分,所以我认为抗体的来源很关键,无论是购买还是自己制作,都需要对其的特性比较了解。

ChIP还有一个问题是细胞的处理,虽然很多公司都提供了现成的试剂可供选择,但是那只是通用性的试剂,真正适合自己细胞的还需要做预试验摸索下。其次是细胞内相互作用的蛋白,可能会由于处理导致不发生作用等等因素导致相应值变低,所以我觉得处理时间,温度等等外部条件还是很重要的。

以上是个人观点,仅供参考!看来我也看错了,不好意思!目前个人认为生物医学研究的瓶颈就是是否能制备高质量的适合多种用途的抗体。

很多所谓的主流研究方法都要依赖抗体。例如Western blot,免疫荧光,流式分析,ELISA,IP,CoIP, ChIP。个人对抗体制备的原理和方法不是很清楚,但是实际过程中很多并不想说明书上说的那样,结果是否漂亮,只有用了才知道。

Western blot应该是抗体的最基本功能,他的最后原理是抗体结合到膜上的抗原,然后通过二抗来显示其位置。免疫共沉淀的抗体就不一样了,他要保证能够将你的目标蛋白及其复合物牢固的结合并通过蛋白A或G将其沉下来。

举个简单的例子说明二者的不同,不知道是否正确,一男(抗体)与一女(抗原)热情的接吻,在床上(膜)可能很容易办到,上述过程类似WB,抗体的功能只是识别固定物(转膜)

上的抗原,风平浪静。相反,一男(抗体)与一女(抗原)热情的接吻,在激流中就不容易办到,上述过程类似免疫沉淀,是动态环境下的识别,而且必须特异性的牢固结合,这种接吻要求是热吻,紧密结合,并且最终用一个钩子(免疫沉淀中叫蛋白A或G)将男的勾下来后,要保证男的还热吻者那个女的(即抗原)。因此要求这个男的(抗体)要紧紧的抱住那个女的(抗原)。可想而知激流中(免疫沉淀)对男的质量要求更高,一定要保证不与女的分手。如果男的还三心二意,可能抱的是其他的女人,这在免疫沉淀中就会产生非特异性条带。因此,免疫沉淀一定要设置对照IG抗体来沉淀,如果随便一个男的(对照IG)也能将某个女的抱下来,那这个女的就是“博爱”,不是真正需要的最爱(特异条带)。

鉴于目前很多男的(抗体)质量不可靠或者不能满足,因此大量的文献喜欢采用标签蛋白(例如,HIS,HA,GFP,MYC等)作为“特异男”来勾引“女”的。

个人认为需要一个个试,看那个能够用于免疫沉淀,有的抗体是针对男的“嘴巴”来设计的,这种抗体当然能够容易将女的抱下来,相反有的是针对其他部位设计制备抗体的,功能也就不一样了。

Co-Ip成功的关键主要有两个:1)男的质量。2)男女接吻时的环境(例如是否有其他干扰因素,沉淀的时间,温度,比例,旋转强度等)

不对指正。tangdl2000的比喻很有意思,呵呵

再次建议楼主把免疫共沉淀的实验目的说下,这样方便讨论,呵呵

想说下免疫沉淀,免疫沉淀是用你的抗体富集目的抗原,然后用WESTERN显示,你的抗体是否结合抗原。

由于是富集了目的抗原,WESTERN不容易做出来的,用免疫沉淀可能容易出结果,但是也容易出杂带。

如果看两个分子是否相互作用,可以用免疫共沉淀。

染色质免疫沉淀(EMSA)主要用于研究转录因子的。

实验技巧是为了实验目的服务的,撇开实验目的,单纯讨论实验技巧,似不可取。

另外建议:发现很多战友发贴,不注明实验目的,这样讨论,可能最后发现所讨论的实验技术并不是为你的实验目的服务的。

GOOD LUCK呵呵,由于我的疏忽,把这个帖子置顶了。

关于抗体的问题,我的看法是。

1)对应WB而言,使用的抗体识别的抗原应该是线性化的抗原(SDS)的作用,因此它识别的不是蛋白在具有正常空间结构时的抗原决定簇,而是在蛋白一级结构上相临的几个AA组成的抗原决定簇。

2)对应FACS而言,多数情况下,它识别的是具有正常高级结构的蛋白的抗原决定簇,这些抗原决定簇可能是由相邻近的AA组成的或者是由于蛋白折叠后原本在一级结构上相距比较远的几个AA组成的,因此WB和FACS的抗体有时能够通用,有时不能通用。

3) Co-IP的情况,我认为和FACS是相类似的。

4) ChIP的情况最为头痛,因为它涉及了一个crosslink的过程,这个可能造成一些抗原决定簇被封闭掉,而且在免疫共沉淀使用的buffer中含有一些变性剂,进一步影响了抗原抗体的结合,因此WB可以用的抗体并不一定能用于ChIP,按照现在的说法,如果不是被validated过的抗体,做ChIP可能需要对多个抗体进行优化评估灵敏性和特异性。

至于是固相杂交还是液像杂交我觉得到不是重点,事实上,和固态的蛋白芯片相比较,液态蛋白芯片(luminex)的效率更高,因为抗原抗体有更加充分的机会接触。我们一般都称之为 IP试验 ,这样就包括 染色质和蛋白 及蛋白和蛋白了谢谢 版主的建议 ,我也是进入实验室不到一年的时间,接触IP的时间更短,试验设计也是在完善阶段,现在主要是实验技术方面的知识太欠缺了

另外 实验的目的,不便说的太详细,因为这个实验有可能投今年的基金,请各位战友谅解谢谢LZ把你的经验拿出来大家分享,最近也在打算做免疫沉淀,学习了各位战友的经验,受益匪浅。我有个问题想请问大家,我的目的蛋白是个跨膜蛋白,表达在哺乳动物细胞膜上,我最终的目的是想把这个蛋白提出来作为抗原去检测患者血清中的抗体,所以对蛋白的量有一定要求。原来标书写的步骤是用免疫沉淀的方法来纯化蛋白,但我认为这个方案不可行,原因是一、哺乳动物细胞蛋白表达量少、膜蛋白提取的量也少,二、免疫沉淀其实就是用抗体去抓取目的蛋白,代价较大,不可能获得大量目的蛋白来作为抗原去行Elisa检测抗体。

三、就算我不惜花钱,免疫沉淀最后洗脱的是Beads,得到的是抗原抗体复合物,会不会影响目标蛋白的抗原性,因为目标蛋白的抗原表位已经被确定的一抗结合了。请各位战友帮忙看看,给些建议,谢谢了。IP本身的假阳性和假阴性和多,具体的操作过程上面的几位谈的挺多了。

我想说的是不管是co-IP还是ChIP,一定要有阴性control,也就是和一抗相同来源的normal IgG。因为珠子本身可以吸附一定的蛋白和DNA,包括一些抗原抗体的非特异性结合,所以很多时候阴性control和实验组时间是量的差别,而不是有或无的关系。这样的结果还是可信的吗?正好今天我也在第一次做这个实验,步骤按着这个程序做的,有经验的人帮我看看。

1、 Add 3 ml ice cold RIPA buffer to cell monolayer and incubate at 4° C for

10 minutes. For suspension cells, add the RIPA buffer to washed cell pellet

in a 15 ml conical centrifuge tube.

2、Disrupt cells by repeated aspiration through a 21 gauge needle and transfer to a 15 ml conical centrifuge tube.

3、Pellet cellular debris by centrifu gation at 10,000xg for 10 minutes at 4° C.

Transfer supernatant to a fresh 15 ml conical centrifuge tube on ice.

Preclear lysate (optional step) by adding 1.0 μg of the appropriate control

IgG (normal mouse, rat, rabbit or goat IgG, corresponding to the host

species of the primary antibody), together with 20 μl of resuspended

volume of Protein A/G PLUS-Agarose. Incubate at 4° C for 30 minutes.

Pellet beads by centrifu gation at 2,500 rpm (approximately 1,000xg) for 5

minutes at 4° C. Transfer supernatant (cell lysate) to a fresh 15 ml conical

centrifuge tube on ice.

4、Transfer 1 ml of the above cell lysate, or approximately 100–500 μg total

cellular protein, to a 1.5 ml microcentrifuge tube. Add 1–10 μl (i.e., 0.2–2

μg) primary antibody (optimal antibody concentration should be determined

by titration) and incubate for 1 hour at 4° C.

5、Add 20 μl of resuspended volume of Protein A/G PLUS-Agarose. Cap tubes and incubate at 4° C on a rocker platform or rotating device for 1 hour to

overnight.

6、Collect immunoprecipitates by centrifugation at 2,500 rpm (approx imately

1,000xg) for 5 minutes at 4° C. Carefully aspirate and discard radioactive

supernatant.

7、 Wash pellet 4 times with 1.0 ml RIPA buffer (more stringent) or PBS (less

stringent), each time repeating centrifugation step above.

8、After final wash, aspirate and discard supernatant and resuspend pellet in

40 μl of 1x electrophoresis sample buffer.

9、Boil samples for 2–3 minutes and analyze 20 μl aliquots by SDS-PAGE and

autoradiography. Unused samples may be stored at -20° C.

10、 Optional: After boiling, samples may be centrifuged to pellet the agarose

beads followed by SDS-PAGE analysis of the supernatant.

不能理解第三步中

Preclear lysate (optional step) by adding 1.0 μg of the appropriate control

IgG (normal mouse, rat, rabbit or goat IgG, corresponding to the host

species of the primary antibody), together with 20 μl of resuspended

volume of Protein A/G PLUS-Agarose. Incubate at 4° C for 30 minutes.

Pellet beads by centrifu gation at 2,500 rpm (approximately 1,000xg) for 5

minutes at 4° C. Transfer supernatant (cell lysate) to a fresh 15 ml conical

centrifuge tube on ice.

这是什么作用?肯定不是对照了啰!!!

第五步,照上面战友的说法孵育的温度、时间、摇床的转速都是很重要的哦?我还准备就在室温呢,会增加非特异性结合?

抗体的量以及总蛋白的量(或者说他们的比值)重要不?需要严格控制不?还是需要调整? 买的是santa cruz的抗体,听说是没有验证过的,但说明书上写明了是可以进行免疫共沉淀的。

心里没底阿。

谢谢Because some proteins such as complement components may bind to the Fc region of the IgG, step 3 can deplete these proteins from your samples.大家的发言都很精彩,我对IP的了解也是最近才开始的,受益匪浅啊这个protocol繁琐而且效果很差。

1.做co-IP是不宜采用变性能力强的去垢剂的lysis buffer,所以不能用RIPA,应采用NP40等弱去垢为基础的lysis buffer.而且,protocol中没有说明多少的细胞加入3ml的lysis buffer,我个人的经验是每组一个10cm plate的细胞足够了,加入1ml lysis buffer with complete protease inhibitor cocktails。

2.步骤3中的预处理需不需要的问题。我个人认为,如果抗体质量足够好(没有明显的杂带,或者杂带确实不会产生影响),则没有必要。

3.protocol中为什么有“radioactivesupernatant”?co-IP和CHIP都不会用同位素啊。而且protocol中离心的转速我感觉太低了,通常5000-10000rpm均可,10000rpm 30s或者5000rpm 2min都不会对抗体抗原-beads复合物产生影响。

4.所有的步骤均需要在4度,主要是抑制蛋白酶活性;抗体的量0.2ug-2ug之间可以,蛋白表达的量最好尽可能的高。santa cruz的抗体既然写了可以做IP,那说明还是没有问题的。呵呵,devil19840一棒子把这个操作步骤打得这么死啊。明天看看结果就知道了。建议:

1.有一种免疫沉淀的方案是有“radioactivesupernatant”,我们一般做的是不用同位素的免疫沉淀方案的,看具体的实验目的了。

2.santa cruz的抗体写了可以做IP,但是出厂不检验,看你的运气了,要多摸索条件。

3.你的抗原是在细胞膜上还是在细胞核上,可根据情况选择裂解液。

4.免疫沉淀的结果最好同时有WESTERN对照,这样可以知道是否成功沉淀了特异性条带。免疫沉淀本身还有个阴性对照。

5.实验注意低温,操作细心。

GOOD LUCK无以为报,投上一票,谢谢。

我做的目的蛋白是做成了转基因小鼠了,在肝细胞的胞浆和胞核均有表达的。

这次只是预试验一下,熟悉整个实验流程,沉淀得到的产物和提取的总蛋白一起做了个western看有没有特异性条带,但没有阴性对照。

沉淀得到的产物和提取的总蛋白sds-page电泳后考染效果还行,至少沉淀得到的产物除了抗体的两条粗条带还有一些细条带,尽管现在还不能排除是否为非特异性的。但好像在目的蛋白的位置没有条带哦,太少?太弱?

God bless me!!作了快半年IP了,都不好意思说,到现在也没得到好的结果,同样也是第一次接触这个实验,实验室没人做过,只好在网上找方法,**里比较少,只有几个帖子转贴的方法,未见有讨论的。

我的实验目的是检测细胞转染一种蛋白之后,培养基中的该蛋白分泌情况,在人体中这种蛋白分泌量极低,而且对培养基直接westernblot未见条带,但对细胞裂解物作western有很强的条带。该蛋白有信号肽,应该分泌出细胞,因无抗体,构建载体时在尾部加上了myc和his片段,我的大致试验过程是:

1。转染该蛋白入HepG2细胞,3小时之后换有或无血清培养基(担心血清里蛋白影响IP过程),24小时之后收集细胞和培养基。

2。westernblot检测细胞裂解物和培养基中表达情况,每次细胞中表达都很好。培养基中都没有见条带。

3。对培养基的IP:

a。1/1000的anti-myc50ul加入到1000ul培养基(直接1000ul,500ul培养基加500ulRIPAbuffer,500ul培养基加500ulTBS都试过),3小时和过夜都尝试过,

b。ProteinG凝胶50ul加入,1-3小时,(在加抗体之前preclear也试过)

c。TBS洗3次,每次离心去上清,小心不丢失凝胶

d。后面基本同western过程。

希望大家指教何处需要改进。

文献中的方法基本也是这样,但就是做不出来,教授不满意压力很大阿~~~谢谢大家贴出经验 一起分享最近我也准备做CO-IP.抗体是自己制备的,不太纯,但是检测抗原比较特异。请教各位,能否在昆虫组织匀浆里做,不用细胞?能否提供一份步骤,谢谢!顶一下。我也即将开始CoIP实验了,其他人没做过都,得自己摸索了,希望能在这获得帮助!!谢谢大家再次有问请教这里的前辈,

我把IP下来的蛋白进行SDS-PAGE电泳,然后进行WESTERN BLOT 或者考马斯亮蓝染色,WESTERN BOT可以明显看到我用于沉淀的蛋白,灰度几乎和抗体的重链差不多,可是考染的结果却只能看到重链和轻连,银染也是这样子,这可怎么办呢?我的目的就是要比较沉下来的东西有什么差别。

沉下来的东西直接进行质谱鉴定应该怎么处理呢?请教各位,本人也在用自己制备的单抗做IP实验,第一次做,很多东西不太明白,望赐教:

1)IP结果跑SDS-PAGE胶,考马染色后,出现抗体重链和轻链带,而且很浓很明显,然而目标蛋白处却很淡,不知是特异的目的带,还是非特异条带?怎么排出这种可能性?

2)我是用虫体组织加RIPA后直接匀浆抽提的总蛋白,但是不知RIPA与组织按照什么比例加,得到的蛋白浓度才适合做IP实验?

3)我已经用protein A做了预处理,但WB后背景比较暗?我也是第一次做coip,结果只有一抗的轻链和重链的地方有条带,目的蛋白或者杂蛋白的条带都没有。用我们提取的蛋白直接做western却能看到目的蛋白。有哪位高手能帮忙分析一下。我们的抗体也是senta的。步骤3是必需的,没有步骤3那么coIP的实验不是严谨的实验。如果没有步骤3那么你怎么排除你coIP下来的蛋白不是跟抗体本身(IgG)结合而下来的呢?如不处理,那么就必须将样品一分为二,增加一个只加对照IgG(抗体是什么源性的加什么)代替抗体的组,同

时进行余下步骤。

该实验细胞裂解液,蛋白酶抑制,低温都很重要。另外最好有同时有两种抗体,用mouse IP,用rabbit WB。或反之。这样可以避免出现IgG轻链和重链,这两条条带太浓,如果目的条带靠的近,你就不用指望能做出漂亮图了。现在有很多抗体都有自己包被好的beads。很方便。

另外IP前需要进行蛋白定量,最好在1mg/ML浓度内,太高了,容易出现假阳性。

最近我们实验室想做这个试验,以前也没有做过,如果有战友做过这个试验,希望介绍点经验和教训,谢谢乐。 应战友要求,在网上找乐一下基础资料,方便大家查看,虽然下面也列出了试验方法,但在实际实验室可能并不一样,希望战友们较少些自己的亲身体会,让大家和我本人…

最近我们实验室想做这个试验,以前也没有做过,如果有战友做过这个试验,希望介绍点经验和教训,谢谢乐。 应战友要求,在网上找乐一下基础资料,方便大家查看,虽然下面也列出了试验方法,但在实际实验室可能并不一样,希望战友们较少些自己的亲身体会,让大家和我本人…

最近我们实验室想做这个试验,以前也没有做过,如果有战友做过这个试验,希望介绍点经验和教训,谢谢乐。 应战友要求,在网上找乐一下基础资料,方便大家查看,虽然下面也列出了试验方法,但在实际实验室可能并不一样,希望战友们较少些自己的亲身体会,让大家和我本人…

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